Cultivo primario de Helicobacter pylori a partir de biopsias gástricas obtenidas por endoscopia

Autores/as

DOI:

https://doi.org/10.51481/amc.v64i2.1180

Palabras clave:

atrofia gástrica, cáncer gástrico, bacteriología, diagnóstico

Resumen

Objetivo: Determinar la viabilidad del cultivo de la bacteria Helicobacter pylori en Costa Rica por medio de la documentación de toma de muestras, la comparación del diagnóstico histopatológico y la descripción de los diagnósticos asociados a los aislamientos obtenidos con los resultados de la ureasa rápida.

Métodos: Investigación descriptiva que involucró a pacientes de entre los 35 y 70 años, de ambos sexos, que asistieron al Servicio de Endoscopia Digestiva del Hospital Clínica Bíblica entre febrero y junio del 2019 para estudio gastroscópico. Se obtuvieron biopsias gástricas para diagnóstico histopatológico, prueba de ureasa rápida y cultivo de Helicobacter pylori. Para este último, se transportaron las biopsias en un medio de transporte semisólido, se maceró el tejido y se cultivó en agar Skirrow y agar selectivo para Helicobacter; una placa de cada medio se incubó a 37 °C en microaerofilia entre 48 horas y 10 días. La positividad del cultivo se realizó por observación de la morfología colonial y la bacteria se identificó por análisis microscópico al fresco, tinción de Gram y pruebas bioquímicas (catalasa, ureasa y oxidasa).
Resultados: Se incluyó a 44 pacientes (edad: 50.6 ± 10.0, 54.5% masculinos). Se recuperó Helicobacter pylori en biopsias de 27 pacientes (61.4% de éxito). La recuperación de la bacteria fue similar en el medio Skirrow y en el selectivo para Helicobacter. El porcentaje de éxito de recuperación semanal aumentó durante el estudio hasta alcanzar un éxito del 100% en la semana 11. Se comparó el cultivo con la ureasa rápida en 27 pacientes y la concordancia entre ambos métodos fue de un coeficiente kappa de Cohen de 0.48. El cultivo detectó la bacteria en un 56% de los pacientes, la ureasa rápida en un 37% y la combinación de ambas técnicas permitió la detección en un 60%. El diagnóstico endoscópico más frecuente en los pacientes con cultivo positivo fue la gastritis eritematosa y gastritis crónica superficial y el diagnóstico histopatológico predominante fue gastritis crónica con atrofia gástrica. El diagnóstico por cultivo coincidió con la detección por azul de toluidina en un 80.4% de los casos.
Conclusiones: Se puede implementar el cultivo de Helicobacter pylori en Costa Rica. Este estudio tuvo un porcentaje de recuperación de la bacteria de 61.4%. La combinación del método de cultivo con la prueba de ureasa rápida y la detección histológica contribuye a un diagnóstico certero y oportuno. Recomendamos que, con base en protocolos descritos en esta investigación, cada laboratorio estandarice las condiciones que le permitan un buen porcentaje de recuperación y una implementación adaptada a sus actividades de rutina.

Descargas

Los datos de descargas todavía no están disponibles.

Biografía del autor/a

Silvia Molina-Castro, Universidad de Costa Rica

Universidad de Costa Rica, Programa de Epidemiología de Cáncer, Instituto de Investigaciones en Salud; Escuela de Medicina, Departamento de Bioquímica

Christian Campos-Núñez, Caja Costarricense de Seguro Social, Hospital San Francisco de Asís

Caja Costarricense de Seguro Social, Hospital San Francisco de Asís, Servicio de Gastroenterología; Hospital Clínica Bíblica, Centro Integrado del Aparato Digestivo. Grecia

Vanessa Ramírez-Mayorga, Universidad de Costa Rica

Universidad de Costa Rica, Programa de Epidemiología de Cáncer, Instituto de Investigaciones en Salud; Escuela de Nutrición, Sección de Nutrición Pública

Citas

Ferlay J, Colombet M, Soerjomataram I, Parkin DM, Piñeros M, Znaor A, et al. Cancer statistics for the year 2020: an overview. Int J Cancer. 2021;149. DOI:10.1002/ijc.33588.

Allemani C, Matsuda T, Di Carlo V, Harewood R, Matz M, Niksic M, et al. Global surveillance of trends in cancer survival 2000-14 (CONCORD-3): analysis of individual records for 37 513 025 patients diagnosed with one of 18 cancers from 322 population-based registries in 71 countries. Lancet. 2018;391:1023-75. DOI: 10.1016/s0140-6736(17)33326-3.

Pinheiro H, Oliveira C, Seruca R, Carneiro F. Hereditary diffuse gastric cancer - pathophysiology and clinical management. Best Pract Res Clin Gastroenterol. 2014;28:1055-68. DOI: 10.1016/j.bpg.2014.09.007.

Correa P, Piazuelo MB. The gastric precancerous cascade. J Dig Dis. 2012;13:2-9. DOI: 10.1111/j.1751-2980.2011.00550.x.

González CA, Megraud F, Buissonniere A, Lujan Barroso L, Agudo A, Duell EJ, et al. Helicobacter pylori infection assessed by ELISA and by immunoblot and noncardia gastric cancer risk in a prospective study: the Eurgast-EPIC project. Ann Oncol. 2012;23:1320-4. DOI: 10.1093/annonc/mdr384.

Megraud F, Bessede E, Varon C. Helicobacter pylori infection and gastric carcinoma. Clin Microbiol Infect. 2015;21:984-90. DOI: 10.1016/j.cmi.2015.06.004.

Malfertheiner P, Megraud F, O’Morain CA, Gisbert JP, Kuipers EJ, Axon AT, et al. Management of Helicobacter pylori infection-the Maastricht V/Florence Consensus Report. Gut. 2017;66:6-30. DOI: 10.1136/gutjnl-2016-312288.

Dixon MF, Genta RM, Yardley JH, Correa P, The participants in the International Workshop on the Histopathology of Gastritis H. Classification and Grading of Gastritis: The Updated Sydney System. Am J Surg Pathol. 1996;20. DOI: 10.1097/00000478-199610000-00001.

Crafa P, Russo M, Miraglia C, Barchi A, Moccia F, Nouvenne A, et al. From Sidney to OLGA: an overview of atrophic gastritis. Acta Biomed. 2018;89:93-9. DOI: 10.23750/abm.v89i8-S.7946.

Skirrow MB. Campylobacter enteritis: a “new” disease. Br Med J. 1977;2:9-11. DOI: 10.1136/bmj.2.6078.9.

Mégraud F, Lehours P. Helicobacter pylori detection and antimicrobial susceptibility testing. Clin Microbiol Rev. 2007;20:280-322. DOI: 10.1128/CMR.00033-06.

Sierra R, Muñoz N, Peña AS, Biemond I, van Duijn W, Lamers CB, et al. Antibodies to Helicobacter pylori and pepsinogen levels in children from Costa Rica: comparison of two areas with different risks for stomach cancer. Cancer Epidemiol Biomarkers Prev. 1992;1:449-54.

Miranda M, Chaves M, San Román M, Durán S, Vargas G, Jiménez E, et al. La relación de Helicobacter pylori con la displasia y el cáncer gástrico en Costa Rica. Rev Biol Trop. 1998;46:829-32. DOI: 10.15517/RBT.V46I3.20473

Blanco-Delgado CA, Rivera P, Hernández F, Hevia F, Guillén F, Durán S, et al. Prevalencia de Helicobacter pylori en pacientes atendidos en el Hospital San Juan de Dios, San José, Costa Rica. Rev Biomed. 2001;12:1-4.

Con SA, Valerín AL, Takeuchi H, Con-Wong R, Con-Chin VG, Con-Chin GR, et al. Helicobacter pylori CagA status associated with gastric cancer incidence rate variability in Costa Rican regions. J Gastroenterol. 2006;41:632-7. DOI: 10.1007/s00535-006-1812-3.

Cornely EC, Forné M, Quintana S. Comparison of two transport media and three culture media for primary isolation of Helicobacter pylori from gastric biopsies. Clin Microbiol Infect. 2002;8:609-10. DOI: 10.1046/j.1469-0691.2002.00454.x.

Cellini L, Di Campli E, Di Bartolomeo S, Bessa LJ, Baffoni M, Di Giulio M. New transport medium for cultural recovery of Helicobacter pylori. J Clin Microbiol. 2014;52:4325. DOI: 10.1128/JCM.02850-14.

Martínez MJF, Rincón MR, De Castro AMB, Sánchez EG, Sánchez JEG, Martín IT, et al. Comparative evaluation of selective and nonselective media for primary isolation of Helicobacter pylori from gastric biopsies. Helicobacter. 1997;2(1):36-9. DOI: 10.1111/j.1523-5378.1997.tb00055.x.

Cover TL. Perspectives on methodology for in vitro culture of Helicobacter pylori. Methods Mol Biol. 2012;921:11-5. DOI: 10.1007/978-1-62703-005-2_3.

Perez-Perez GI, Van TN, Thu Huong D, Zhan G, Nguyet Anh D, Nguyet NT, et al. Isolation and characterization of Helicobacter pylori recovered from gastric biopsies under anaerobic conditions. Diagn Microbiol Infect Dis. 2016;86:136-40. DOI: 10.1016/j.diagmicrobio.2016.07.009.

Houghton J, Ramamoorthy R, Pandya H, Dhirmalani R, Kim KH. Human plasma is directly bacteriocidal against Helicobacter pylori in vitro, potentially explaining the decreased detection of Helicobacter pylori during acute upper GI bleeding. Gastrointest Endosc. 2002;55:11-6. DOI: 10.1067/mge.2002.120391.

Schilling D, Demel A, Adamek HE, Nüsse T, Weidmann E, Riemann JF. A negative rapid urease test is unreliable for exclusion of Helicobacter pylori infection during acute phase of ulcer bleeding: A prospective case control study. Dig Liv Dis. 2003;35:217-21. DOI: 10.1016/S1590-8658(03)00058-6.

Bermejo F, Boixeda D, Gisbert JP, Defarges V, Sanz JM, Redondo C, Martiní de Argila C, et al. Rapid urease test utility for Helicobacter pylori infection diagnosis in gastric ulcer disease. Hepatogastroenterology. 2002;49:572-5.

Castellote J, Guardiola J, Porta F, Falcó A. Rapid urease test: Effect of preimmersion of biopsy forceps in formalin. Gastrointest Endosc. 2001;53:744-6. DOI: 10.1067/mge.2001.114786.

Ozaslan E, Koseoglu T, Purnak T, Yildiz A. A forgotten cause of false negative rapid urease test: formalin contamination of the sample. Hepatogastroenterol. 2010;57.

Uotani T, Graham DY. Diagnosis of Helicobacter pylori using the rapid urease test. Ann Transl Med. 2014;3:9. DOI: 10.3978/j.issn.2305-5839.2014.12.04

Publicado

2022-04-01

Cómo citar

Molina-Castro, S., Campos-Núñez, C., Durán-Bermúdez, S., Chaves-Cerventes, M., & Ramírez-Mayorga, V. (2022). Cultivo primario de Helicobacter pylori a partir de biopsias gástricas obtenidas por endoscopia. Acta Médica Costarricense, 64(2), 1–9. https://doi.org/10.51481/amc.v64i2.1180

Artículos más leídos del mismo autor/a